5. DESGLOSE DE CONTENIDO (temática)

I. PRINCIPIOS DEL CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES 1.1. Antecedentes.  1.2. Conceptos básicos. 1.3. Requerimientos de un laboratorio de cultivo de tejidos: áreas, materiales y equipo. 1.4. Métodos asépticos: técnicas de esterilización y manipulación. Prácticas: Conocimiento de la infraestructura, equipo, materiales y reactivos del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales. Aplicación de técnicas de esterilización (utilización del autoclave), desinfección (explantes, instrumental) y uso de la campana de flujo laminar. II. ETAPAS DE LA MICROPROPAGACIÓN 2.1. Introducción. 2.2. Etapa 0. Selección de las plantas madre. 2.3. Etapa 1. Establecimiento de los cultivos axénicos. 2.4. Etapa 2. Multiplicación del tejido. 2.5. Etapa 3. Elongación y enraizamiento. 2.6. Etapa 4. Adaptación al medio externo. III. NUTRICION IN VITRO DE LOS TEJIDOS VEGETALES 3.1. Composición química de un medio de cultivo. ·         Sales inorgánicas (Macro y micronutrientes) ·         Vitaminas ·         Reguladores de crecimiento ·         Aminoácidos ·         Carbohidratos ·         Agua ·         Agentes solidificantes ·         Suplementos no definidos ·         Condición física de los nutrientes del medio (medio gelificado, líquido estacionario y líquido agitado). 3.2. Preparación del medio de cultivo. ·         Preparación de soluciones concentradas ·         Procedimiento para la elaboración de un medio de cultivo ·         Ajuste de pH ·         Disolución del agar y distribución del medio ·         Esterilización del medio ·         Vida de anaquel. Prácticas: Preparación de soluciones concentradas de los macro y micronutrientes de los medios de cultivo de Vacin y Went, 1949 (VW) y el de  Murashige y Skoog,  1962 (MS). Preparación de los medios de cultivo VW (1949) y MS (1962). Siembra in vitro de semillas de las orquídeas Catleya aurantiaca y Oncidium sphacelatum en los medios de cultivo  MS y VW. IV. CONTROL HORMONAL DEL CRECIMIENTO Y DESARROLLO IN VITRO. 4.1. Auxinas 4.2. Citocininas 4.3. Giberelinas 4.4. Acido abscísico. Prácticas: Preparación de soluciones concentradas de reguladores de crecimiento. Establecimiento in vitro de yemas de rosal y/o durazno. V. PROBLEMAS ASOCIADOS AL CTV Y FORMAS DE COMBATIRLOS 5.1. Contaminación 5.2. Vitrificación 5.3. Oxidación  VI. SELECCIÓN Y DESINFECCIÓN DEL EXPLANTE 6.1. Tipos de explantes  y  sus respuestas al cultivo in vitro. 6.2. Selección del explante 6.3. Métodos de desinfección. VII. SISTEMAS PARA LA REGENERACION DE PLANTAS IN VITRO 7.1. Organogénesis 7.2. Embriogénesis 7.3. Cultivo de meristemos, yemas y ápices 7.4. Culltivo de callos: inducción, mantenimiento y usos. Prácticas: Micropropagación de una especie vegetal seleccionada previamente por cada estudiante de la unidad de aprendizaje. VIII. ADAPTACION DE VITROPLANTAS A CONDICIONES NATURALES. 8.1. Características de las plantas propagadas in vitro 8.2. Fase de aclimatación: Pre-acondicionamiento al trasplante 8.3. Fase de invernadero: Sustratos, prevención de enfermedades, factores ambientales. 8.4. Fase de campo. IX. VARIABILIDAD GENETICA DE LAS PLANTAS GENERADAS IN VITRO. 9.1. Generalidades. 9.2. Tipo de variaciones. 9.3. Selección de variantes. X. APLICACIONES DEL CTV PARA LA CONSERVACION DE GERMOPLASMA. 10.1. Generalidades. 10.2. Conservación a corto, mediano y largo plazo. XI. SEMINARIO DE EXPOSICIÓN DE ARTICULOS CIENTIFICOS